WikiSort.ru - Не сортированное

ПОИСК ПО САЙТУ | о проекте
Фотоингибирование фотосистемы II приводит к подавлению её способности транспортировать электроны. Она постоянно репарируется за счёт деградации и синтеза de novo белка D1. Линкомицин блокирует синтез белков хлоропласта.

Фотоингибирование — индуцируемое светом снижение фотосинтетической активности растений, водорослей или цианобактерии. Фотосистема II (ФСII) более чувствительна к свету, чем другие фотосинтетические машины, поэтому большинство исследователей определяют термин как светоиндуцируемое повреждения ФСII. В живых организмах, поврежденные избыточным освещением фотосистемы II постоянно репарируются за счёт деградации и синтеза белка D1 фотосинтетического реакционного центра ФСII. Понятие фотоингибирование также используется в более широком смысле, в значении «динамическое фотоингибирование», чтобы описать все реакции, которые приводят к снижению эффективности фотосинтеза, когда растения подвергаются воздействию света.

История

Первым учёным, который на практике измерившим уровень фотоингибирования был Бессель Кок, который опубликовал свои результаты в 1956 году[1]. Уже на ранних этапах исследования феномена, стало очевидно, что растения имеют некий механизм репарации, который постоянно устраняет повреждения. В 1966 году, Джонс и Кок измерили спектр действия фотоингибирования и обнаружили, что наибольший эффект оказывал ультрафиолетовый свет[2]. Было также установлено, что в видимой части спектра пик фотоингибирования находился в красном регионе. В 1980-х годах фотоингибирование стало популярной темой среди исследователей фотосинтеза, а концепция повреждения и репарации была переоткрыта. Началу исследований положила статья Кайла Охада и Арнтцена 1984 года, в которой они показали, что фотоингибирование сопровождается селективной потерей белка 32-кДа, позже идентифицированного как белок D1[3]. Фоточувствительность ФСII с химически инактивированным водоокисляющим комплексом изучалась в 1980-х и начале 1990-х годов[4][5]. В статье Имре Васса и коллег от 1992 года была описана акцепторная сторона механизма фотоингибирования[6]. Измерение скорости образования синглетного кислорода фотосистемой II в условиях фотоингибирования представило дополнительные доказательства в пользу акцепторного механизма[7]. Концепция цикла репарация, в котором постоянно происходит репарация повреждений, эволюционировала и была рассмотрен Аро и соавт. в 1993 году[8]. С тех пор были обнаружены многие детали цикла репарации, включая тот факт, что FtsH протеаза играет важную роль в деградации белка D1[9]. В 1996 году в статье Таэстчжавы и Аро было показано, что константа скорости фотоингибирования прямо пропорциональна интенсивности света, что противоречило более раннему предположению о том, что фотоингибирование вызвано долей световой энергии, которая превышает максимальные возможности фотосинтеза[10]. В следующем году группа Ицхака Охады провела эксперимент по фотоингибированию фотосистемы II лазерным импульсом, и на основании полученных данных высказали предположение, что разделение зарядов может быть вредными, поскольку оно может привести к образованию синглетного кислорода[11]. В научной среде постоянно обсуждаются возможный молекулярный механизм (или механизмы) фотоингибирования. Новейшим кандидатом является марганцевый механизм, предложенной в 2005 группой Эсы Таэстчжавы[12]. Сходный механизм был предложен группой Норио Мурата в том же 2005 году[13].

Что ингибируется

Димер цианобактериальной фотосистемы II.

Фотоингибирование происходит у всех организмов, способных к оксигенному фотосинтезу, от сосудистых растений и до цианобактерий[14][15]. Во всех случаях синий свет вызывает более сильный эффект, чем другие длины волн видимого света, а из всех длин волн самое сильное деструктивное влияние оказывает ультрафиолетовый свет[14]. По сути своей фотоингибирование представляет серию фотохимических реакций, которые подавляют ту или иную активность ФСII, но нет консенсуса относительно того, что это за реакции. Первым как правило утрачивает свою активность водоокисляющий комплекс[12][13][16][17]. Однако, ингибирование ФСII в анаэробных условиях приводит в основном к ингибированию переноса электронов на акцепторной стороне ФСII (перенос электрона от специальной пары хлорофиллов к пластохинону)[6]. Ультрафиолетовый свет ингибирует водоокисляющий комплекс ещё до того, как остальная ФСII потеряет активность. Фотосистема I (ФСI) менее чувствительна к повреждению светом чем ФСII, но всё таки наблюдается её медленное ингибирование с течением времени[18]. Фотоингибирование ФСI происходит у холодочувствительных растений и зависит от потока электронов от ФСII к ФСI.

Как часто происходят повреждения?

Фотосистема II повреждается светом независимо от его интенсивности. Квантовый выход повреждающей реакции в типичных листьях высших растений или в препаратах тилакоидной мембраны находится в диапазоне от 10−8 до 10−7 и не зависит от интенсивности света[10][19]. Это означает, что повреждается примерно один комплекс фотосистемы II на каждые 10-100 миллионов захваченных фотонов. Из этих данных следует, что фотоингибирование происходит при любой интенсивности света и константа скорости фотоингибирования прямо пропорциональна его интенсивности. Некоторые результаты указывают на то, что тусклый свет вызывает даже более сильные повреждения, чем яркий свет[11].

Молекулярные механизмы

Механизм(ы) фотоингибирования находятся в стадии обсуждения, было предложено несколько разных механизмов[16]. Активные формы кислорода, особенно синглетного кислорода, играют роль в механизме ингибирования акцепторной стороны фотосистемы II, механизме синглетного кислорода и механизме ингибирования при низкой освещённости. Однако активные формы кислорода не играют непосредственную роль в марганцевом механизме и механизме ингибирования донорной стороны фотосистемы II. Фотоингибирование ФСII приводит к образованию синглетного кислорода[7] и других активных форм кислорода, которые ингибируют цикл репарации ФСII, подавляя синтез белка в хлоропласте[20].

Фотоингибирование акцепторной стороны

Яркий свет вызывает восстановление пула пластохинона, что приводит к протонированию и двойному восстановлению (и двойному протонированию) электронного акцептора QА Фотосистемы II. Протонированная и полностью восстановленная форма QА не может участвовать в транспорте электронов. Кроме того, реакция разделения зарядов в заингибированной фотосистеме II с большой вероятностью приводит к переходу первичного донора электронов (П680) в триплетное состояние. Триплет П680 может вступать в реакцию с кислородом и образовывать высоко реакционноспособный синглетный кислород[6].

Фотоингибирование донорной стороны

Если водоокисляющий комплекс инактивировать химически, то остальные элементы переноса электронов становится очень чувствительны к свету[4][19]. Было высказано предположение, что даже в здоровом листе водоокисляющий комплекс не всегда функционируют во всех комплексах фотосистемы II, и те из них, в которых он не работает, склонны к быстрому и необратимому фотоингибированию[21].

Марганцевый механизм

Фотон поглощённый ионами марганца в марганцевом кластере водоокисляющего комплекса вызывает его инактивацию. Дальнейшее торможение реакций переноса электронов происходит по механизму ингибирования донорной стороны. В пользу этого механизма говорят данные о спектре действия фотоингибирования[12].

Механизм синглетного кислорода

Ингибирование фотосистема II вызвано синглетным кислородом, который образуется либо слабо сопряжёнными молекулами хлорофилла[22] или восстановленными цитохромами и железосерными центрами[23].

Механизма фотоингибирования при низкой освещенности

Разделение зарядов в фотосистеме II приводит к появлению триплетного П680 и, как следствие, синглетного кислорода, а разделение зарядов более вероятно при низком освещении, чем при высокой интенсивности света[11].

Кинетика и спектр действия

Если измерить кинетику фотоингибирования в листьях, цианобактериях или водорослях, окрашенных линкомицином или в изолированной тилакоидной мембране в которой цикл репарации не нарушает кинетику, то фотоингибирование будет описывается уравнением реакции первого порядка. Данные от группы С. У. Чоу указывают на то, что в листьях перца (Capsicum annuum) вместо реакция первого имеется псевдоравновесие, даже когда цикл репарации заблокирован. Этому факту можно дать объяснение, если предположить, что ингибирование части ФСII защищает оставшиеся активные реакционные центры от повреждений[24]. Как видимый, так и ультрафиолетовый свет вызывают фотоингибирование, причём действие первого оказывается значительно более разрушительным[12][23][25]. Некоторые исследователи считают, что ультрафиолет и видимый свет индуцируют фотоингибирование по двум разным механизмам[26], в то время как другие подчёркивают сходство между реакциями ингибирования, протекающими под воздействием разных диапазонов длин волн[12][13].

Цикл репарации фотосистемы II

Под воздействием света в фотосинтезирующих организмах на свету постоянно происходит фотоингибирование и поэтому они должны постоянно исправлять возникающие повреждения[8]. Цикл репарации фотосистемы II происходит в хлоропластах и цианобактериях: он заключается в деградации старого и синтезе нового D1 белка ФСII с последующей сборки реакционного центра. Остальные белки фотосистемы рециркулируют и вновь используются для сборки ФСII. Из-за быстрой репарации наиболее реакционные центры ФСII не фотоингибируется даже если растение растёт на ярком свету. Однако, экологические стрессы, например, экстремальные температуры, засоление и засуха, ограничивают поступлении диоксида углерода в цикл фиксации углерода, что уменьшает скорость репарации ФСII[27].

При исследовании фотоингибирования цикл репарации часто блокируют антибиотиками (линкомицин или левомицетин), которые останавливают синтез белка в хлоропласте. Синтез белка происходит только в не разрушенном образце, так что линкомицин не нужен, когда фотоингибирование измеряется в изолированных мембранах[27].

Защитные механизмы

Ксантофилловый цикл играет важную роль в защите растений от фотоингибирования.

Растения имеют механизмы, защищающие их от неблагоприятного воздействия яркого света. Наиболее изучен биохимический защитный механизм нефотохимического тушения энергии возбуждения[28]. Фотоингибирование, вызванное видимым светом, у мутанта Arabidopsis thaliana без нефотохимического тушения происходит на ~25 % быстрее у дикого типа. Очевидно также, что поворот или складывания листьев, как это происходит, например, у кислицы в ответ на воздействие яркого света, защищает от фотоингибирования.

Измерение

Эффект облучения светом на соотношение вариабельной и максимальной флуоресценции (FV/FM) листьев собачьей мяты. Поток фотонов составляет 1000 микромоль м−2с−1, что соответствует половине мощности дневного света. Фотоповреждения ФСII с одинаковой частотой происходят в стебельке листа, опущенном в воду и в линкомицин, однако, у образца в воде скорость репарации настолько велика, что не происходит снижения отношения (FV/FM).

Фотоингибирование можно измерить в изолированных тилакоидных мембранах или их подфракциях, или же в интактных клетках цианобактерий путём измерения скорости выделения кислорода в условиях полного насыщения светом и в присутствии искусственных акцепторов электронов (реактивы хилла).

Степень фотоингибирования в интактных листьях можно померить используя флуориметр для измерения отношения вариабельного и максимального значение флуоресценции хлорофилла a (FV/FM)[16]. Из этого показателя можно получит значение степени фотоингибрования, поскольку значительная часть энергии высвобождается в виде флуоресценции хлорофилла а в условиях, когда много возбужденных электронов от ФСII не переносятся на акцептор, а вместо этого переходят обратно в основное энергетическое состояние.

Перед измерением отношения FV/FM, листья должны инкубироваться в темноте в течение не менее 10 минут, а желательно дольше, для того чтобы снять нефотохимическое тушение.

Вспышки света

Фотоингибрование также можно индуцировать короткими вспышками света, используя импульсный лазера или ксеноновые лампы-вспышки. При очень коротких вспышках эффективность фотоингибирования зависит от паузы между вспышками[11]. Такую зависимость объяснили тем, что вспышки вызывают разделение зарядов в ФСII с последующим производством синглетного кислорода. Интерпретация была подвергнута критике, поскольку эффективность фотоингибирования, вызванного вспышками ксеноновой лампы всё же зависит от энергии вспышки даже при таких сильных вспышках, что они насыщают реакцию разделения зарядов[12].

Динамическое фотоингибирование

Некоторые исследователи предпочитают определять термин «фотоингибирование» так, что под ним подразумеваются все реакции, которые снижают квантовый выход фотосинтеза, когда растение подвергается воздействию света[29][30]. Термин «динамическое фотоингибирование» включает в себя явления, которые обратимо снижают уровень фотосинтеза на свету, а термины «фотоповреждения» или «необратимое фотоингибирование» охватывают понятие фотоингибирования, связанное непосредственно с разрушительным действием света. Основной механизм динамического фотоингибирования — нефотохимическое тушение энергии возбуждения, поглощённой ФСII. Динамические фотоингибирование — это акклиматизация к условиям яркого света, а не вызванные светом повреждения и поэтому «динамическое фотоингибирование» на самом деле защищает растения от «фотоингибирования».

Экология фотоингибирования

Фотоингибирование может привести к обесцвечиванию кораллов[27].

См. также

Примечания

  1. ↑ Kok B (1956). “On the inhibition of photosynthesis by intense light”. Biochimica et Biophysica Acta. 21 (2): 234—244. DOI:10.1016/0006-3002(56)90003-8. PMID 13363902.
  2. ↑ Jones LW & Kok B (1966). “Photoinhibition of Chloroplast Reactions. I. Kinetics and Action Spectra”. Plant Physiology. 41 (6): 1037—1043. DOI:10.1104/pp.41.6.1037. PMC 1086469. PMID 16656345.
  3. ↑ Kyle DJ, Ohad I, Arntzen CJ (1984). “Membrane protein damage and repair: Selective loss of a quinone-protein function in chloroplast membranes”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 81 (13): 4070—4074. DOI:10.1073/pnas.81.13.4070. PMC 345370. PMID 16593483.
  4. 1 2 Callahan FE, Becker DW & Cheniae GM (1986). “Studies on the Photoactivation of the Water-Oxidizing Enzyme: II. Characterization of Weak Light Photoinhibition of PSII and Its Light-Induced Recovery”. Plant Physiology. 82 (1): 261—269. DOI:10.1104/pp.82.1.261. PMC 1056100. PMID 16665003.
  5. ↑ Jegerschöld C, Virgin I & Styring S (1990). “Light-dependent degradation of the D1 protein in photosystem II is accelerated after inhibition of the water splitting reaction”. Biochemistry. 29 (26): 6179—6186. DOI:10.1021/bi00478a010. PMID 2207066.
  6. 1 2 3 Vass I, Styring S, Hundal T, Koivuniemi M, Aro E-M & Andersson B (1992). “Reversible and irreversible intermediates during photoinhibition of photosystem II: Stable reduced QA species promote chlorophyll triplet formation”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 89 (4): 1408—1412. DOI:10.1073/pnas.89.4.1408.
  7. 1 2 Hideg É, Kálai T, Hideg K & Vass I (1998). “Photoinhibition of photosynthesis in vivo results in singlet oxygen production detection via nitroxide-induced fluorescence quenching in broad bean leaves”. Biochemistry. 37 (33): 11405—11411. DOI:10.1021/bi972890. PMID 9708975.
  8. 1 2 Aro E-M, Virgin I & Andersson B (1993). “Photoinhibition of Photosystem II – inactivation, protein damage and turnover”. Biophysica et Biochimica Acta. 1143 (2): 113—134. DOI:10.1016/0005-2728(93)90134-2.
  9. ↑ Bailey S, Thompson E, Nixon PJ, Horton P, Mullineaux CW, Robinson C & Mann NH (2002). “A critical role for the Var2 FtsH homologue of Arabidopsis thaliana in the Photosystem II repair cycle in vivo”. Journal of Biological Chemistry. 277 (3): 2006—2011. DOI:10.1074/jbc.M105878200. PMID 11717304.
  10. 1 2 Tyystjärvi, E & Aro, E-M (1996). “The rate constant of photoinhibition, measured in lincomycin-treated leaves, is directly proportional to light intensity”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 93 (5): 2213—2218. DOI:10.1073/pnas.93.5.2213. PMC 39937. PMID 11607639.
  11. 1 2 3 4 Keren N, Berg A, van Kan PJM, Levanon H & Ohad I (1997). “Mechanism of photosystem II photoinactivation and D1 protein degradation at low light: The role of back electron flow”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 94 (4): 1579—1584. DOI:10.1073/pnas.94.4.1579. PMC 19834. PMID 11038602.
  12. 1 2 3 4 5 6 Hakala M, Tuominen I, Keränen M, Tyystjärvi T & Tyystjärvi E (2005). “Evidence for the role of the oxygen-evolving manganese complex in photoinhibition of Photosystem II”. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics. 1706 (1—2): 68—80. DOI:10.1016/j.bbabio.2004.09.001. PMID 15620366.
  13. 1 2 3 Ohnishi N, Allakhverdiev SI, Takahashi S, Higashi S, Watanabe M, Nishiyama Y & Murata N (2005). “Two-Step Mechanism of Photodamage to Photosystem II: Step 1 Occurs at the Oxygen-Evolving Complex and Step 2 Occurs at the Photochemical Reaction Center”. Biochemistry. 44 (23): 8494—8499. DOI:10.1021/bi047518q. PMID 15938639.
  14. 1 2 Tyystjärvi T, Tuominen I, Herranen M, Aro E-M, Tyystjärvi E (2002). “Action spectrum of psbA gene transcription is similar to that of photoinhibition in Synechocystis sp. PCC 6803”. FEBS Letters. 516 (1—3): 167—171. DOI:10.1016/S0014-5793(02)02537-1. PMID 11959126.
  15. ↑ Nishiyama Y, Allakhverdiev SI & Murata N (2002). “Inhibition of the repair of Photosystem II by oxidative stress in cyanobacteria”. Photosynthesis Research. 516 (1—3): 167—171. DOI:10.1007/s11120-004-6434-0. PMID 16049747.
  16. 1 2 3 Tyystjärvi E (2008). “Photoinhibition of Photosystem II and photodamage of the oxygen-evolving manganese cluster”. Coordination Chemistry Reviews. 252 (3—4): 361—376. DOI:10.1016/j.ccr.2007.08.021.
  17. ↑ Krieger-Liszkay A, Fufezan C & Trebst A (2008). “Singlet oxygen production in photosystem II and related protection mechanism”. Photosynthesis Research. 98 (1—3): 551—564. DOI:10.1007/s11120-008-9349-3. PMID 18780159.
  18. ↑ Sonoike K (1996). “Photoinhibition of photosystem I: Its physiological significance in the chilling sensitivity of plants”. Plant and Cell Physiology. 37: 239—247. DOI:10.1093/oxfordjournals.pcp.a028938.
  19. 1 2 Eckert HJ, Geiken B, Bernarding J, Napiwotzki A, Eichler HJ & Renger G (1991). “Two sites of photoinhibition of the electron-transfer in oxygen evolving and Tris-treated PS-II membrane-fragments from spinach”. Photosynthesis Research. 27 (2): 97—108. DOI:10.1007/BF00033249.
  20. ↑ Nishiyama Y, Allakhverdiev SI & Murata N (2006). “A new paradigm for the action of reactive oxygen species in the photoinhibition of photosystem II”. Biophysica et Biochimica Acta - Bioenergetics. 1757 (7): 742—749. DOI:10.1016/j.bbabio.2006.05.013. PMID 16784721.
  21. ↑ Anderson JM, Park Y-I & Chow WS (1998). “Unifying model for the photoinactivation of Photosystem II in vivo: a hypothesis”. Photosynthesis Research. 56: 1—13. DOI:10.1023/A:1005946808488.
  22. ↑ Santabarbara S, Cazzalini I, Rivadossi A, Garlaschi FM, Zucchelli G & Jennings RC (2002). “Photoinhibition in vivo and in vitro involves weakly coupled chlorophyll-protein complexes”. Photochemistry and Photobiology. 75 (6): 613—618. DOI:10.1562/0031-8655(2002)0750613PIVAIV2.0.CO2.
  23. 1 2 Jung J & Kim H-S (1990). “The chromophores as endogenous sensitizers involved in the photogeneration of singlet oxygen in spinach thylakoids”. Photochemistry and Photobiology. 52 (5): 1003—1009. DOI:10.1111/j.1751-1097.1990.tb01817.x.
  24. ↑ Lee HY, Hong YN & Chow WS (2001). “Photoinactivation of photosystem II complexes and photoprotection by non-functional neighbours in Capsicum annuum L. leaves”. Planta. 212 (3): 332—342. DOI:10.1007/s004250000398.
  25. ↑ Sarvikas P, Hakala M, Pätsikkä E, Tyystjärvi T & Tyystjärvi E (2006). “Action spectrum of photoinhibition in leaves of wild type and npq1-2 and npq4-1 mutants of Arabidopsis thaliana”. Plant and Cell Physiology. 47 (3): 391—400. DOI:10.1093/pcp/pcj006. PMID 16415063.
  26. ↑ Sicora C, Mate Z & Vass I (2003). “The interaction of visible and UV-B light during photodamage and repair of Photosystem II”. Photosynthesis Research. 75 (2): 127—137. DOI:10.1023/A:1022852631339. PMID 16245083.
  27. 1 2 3 Takahashi S & Murata N (2008). “How do environmental stresses accelerate photoinhibition”. Trends in Plant Science. 13 (4): 178—182. DOI:10.1016/j.tplants.2008.01.005. PMID 18328775.
  28. ↑ Krause GH & Jahns P (2004) «Non-photochemical energy dissipation determined by chlorophyll fluorescence quenching: Characterization and function» in Papageorgiou GC & Govindjee (eds.
  29. ↑ Powles SB (1984). “Photoinhibition of photosynthesis induced by visible light”. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology. 35: 15—44. DOI:10.1146/annurev.pp.35.060184.000311.
  30. ↑ Hall DO & Rao KK. Photosynthesis. — Cambridge University Press, Cambridge, 1999. — ISBN 978-0-521-64497-6.

Литература

Ссылки

Данная страница на сайте WikiSort.ru содержит текст со страницы сайта "Википедия".

Если Вы хотите её отредактировать, то можете сделать это на странице редактирования в Википедии.

Если сделанные Вами правки не будут кем-нибудь удалены, то через несколько дней они появятся на сайте WikiSort.ru .



Текст в блоке "Читать" взят с сайта "Википедия" и доступен по лицензии Creative Commons Attribution-ShareAlike; в отдельных случаях могут действовать дополнительные условия.

Другой контент может иметь иную лицензию. Перед использованием материалов сайта WikiSort.ru внимательно изучите правила лицензирования конкретных элементов наполнения сайта.

2019-2024
WikiSort.ru - проект по пересортировке и дополнению контента Википедии