Кристаллическая структура S. aureus Cas9 в комплексе с сгРНК и её целевой ДНК в разрешении 2.6 A˚. (Nishimasu, et al. 2015)
Cas9 (англ.CRISPR associated protein 9, CRISPR-ассоциированный белок) — это управляемая при помощи РНК-гидов эндонуклеаза, связанная с адаптивной иммунной системой CRISPR (англ.Clustered Regularly Interspaced Palindromic Repeats) у ряда бактерий, в частности Streptococcus pyogenes. S. pyogenes использует Cas9 для запоминания[1], последующей проверки и разрезания чужеродной ДНК[2], например, ДНК бактериофагов или плазмид.
Cas9 выполняет проверку посредством раскручивания инородной ДНК и определения её комплементарности с двадцатью спаренными основаниями спейсерауправляющей РНК. Если субстрат комплементарен управляющей РНК, Cas9 расщепляет чужую ДНК. В этом смысле механизм CRISPR-Cas9 имеет ряд параллелей с механизмом РНК-интерференции (RNAi) у эукариот. Безопасность практического применения данного метода определяется в том числе и тем фактом, является ли искомая последовательность двадцати спаренных оснований уникальной в модифицируемой ДНК.
Использование Cas9 в генной инженерии
Кроме изначальной функции в бактериальном иммунитете, белок Cas9 активно используют для создания точечных разрывов в двойной спирали ДНК, такие разрывы могут приводить к инактивации генов или созданию гетерологичных генов посредством соединения негомологичных концов и соответствующей гомологичной рекомбинации. Вместе с белками ZFN и TALEN, Cas9 становится значимым инструментом редактирования генома. Более того, создана технология, позволяющая вносить точечную мутацию не разрезая цепь ДНК, а путём преобразования одного нуклеотидного основания в другое[3].
Механизм избирательного ингибирования транскрипции с помощью dCas9 путём стерического препятствияВарианты Cas9, которые связываются с ДНК, но не расщепляют её могут быть использованы для создания искусственных факторов транскрипции для избирательного регулирования транскрипционной активации и репрессии
К 2012 году Cas9 приобрёл популярность, потому что он позволяет расщеплять практически любую нуклеотидную последовательность, комплементарную управляющей РНК[2]. Поскольку избирательность Cas9 является следствием комплементарности управляющей РНК и ДНК, а не модификации самого белка (в отличие от случаев TALEN и ZFN), для новых ДНК-мишеней возможна выработка специфических Cas9[4]. Варианты Cas9, которые связывают ДНК, но не расщепляют её (dCas9), могут быть использованы для доставки транскрипционных активаторов или репрессоров к специфичным последовательностям ДНК с целью регулирования транскрипционной активации и репрессии[5][6]. Хотя природный Cas9 требует составления управляющей РНК из двух в корне различных РНК — CRISPR-РНК (crRNA), и транс-активационную РНК (tracrRNA)[2], нацеливание Cas9 было упрощено при помощи выработки единой химерной управляющей РНК. Предполагается, что Cas9 можно будет использовать для изменения генома целых популяций организмов[7]. В 2015 году посредством Cas9 впервые был модифицирован геном человеческого эмбриона[8]. Разработана технология иммуногеномной инженерии гибридом, позволяющая быстро перепрограммировать специфичность их антител с помощью Cas9[9].
Создана технология, которая позволяет редактировать отдельные «буквы» ДНК и РНК, что позволит лечить врожденные заболевания, вызванные точечными мутациями.[10]
Создана технология MAGESTIC (multiplexed accurate genome editing with short, trackable, integrated cellular barcodes), которая не только расщепляет ДНК, но ещё и доставляет к месту разрыва кусок ДНК необходимый для точной замены (с помощью гибридного связывающего ДНК белка LexA-Fkh1p), что повышает точность и эффективность редактирования[11][12]
Использование dCas9 в эпигенетике
Соединив инактивированную молекулу dCas9, которая связывает ДНК, но не расщепляет её, с нуклеазой FokI, удается получить нуклеазы и рестриктазы для высокоселективного разрезания ДНК[13][14][15]. Разработан также способ избирательного эпигенетического перепрограммирования активности генов с помощью инактивированной молекулы dCas9, соединенной с ферментом, осуществляющим деметилирование ДНК[16]. Причём такое перепрограммирование эпигенома можно проводить даже in vivo[17]. Позднее выяснилось, что если укоротить управляющую РНК до 14-15 нуклеотидов, то молекула Cas9 теряет способность разрезать ДНК[18][19]. Используя это свойство удалось создать систему для избирательной активации определённых генов in vivo и проверить её эффективность путем лечения мышек со смоделированными заболеваниями[20] У этого метода есть только одна проблема: обычно система CRISPR загружается в безвредный вирус, называемый аденоассоциированным вирусом (AAV), который переносит систему в клетку. Но весь белок, состоящий из dCas9 и направляющей РНК, слишком велик, чтобы поместиться в один AAV. Чтобы обойти эту проблему, исследователи загрузили dCas9 в один вирус, а управляющую РНК — в другой[20].
Новые способы доставки Cas9 в клетку
Основными требованиями к системе доставки Cas9 помимо высокой эффективности доставки является:
(1) конструкция синтезирующая Cas9 не должна встраиваться в геном клетки и не должна быть в клетке постоянно чтобы не мешать работе клетки и не спровоцировать иммунных реакций;
(2) средство доставки должно быть способно вместить достаточно большие по размерам фермент Cas9 или кодирующую его мРНК, а также одну или несколько направляющих РНК;
(3) оно должно быть удобно для использования в виде инъекций;
(4) такое средство вместе с Cas9 и направляющими РНК должно быть достаточно легко воспроизводимым для крупномасштабного производства лекарственного препарата для борьбы с распространенными болезнями.
Таким критериям в отличие от вирусных систем доставки, отвечают липидные наночастицы. Так, например, была создана биодеградируемая система доставки Cas9 липидной наночастицей, которая позволила после однократного введения достичь in vivo более 97 % ингибирования уровня одного из белков сыворотки крови. При этом такое однократное введение, несмотря на временный характер системы доставки и компонентов системы редактирования, приводило к долговременному ингибированию продолжавшемуся в течение 12 месяцев[21].
Модификация Cas9
Модификация Cas9 путем её слияния с хроматин-модулирующими пептидами, полученными из белков группы высокой подвижности HMGN1 и HMGB1, гистонаH1 и комплексов ремоделированияхроматина, повышает её активность в несколько раз, особенно в отношении рефрактерных для неё участков хроматина. Эта стратегия слияния, называемая CRISPR-хром (англ. CRISPR-chrom), может быть использована для улучшения эффективности работы нуклеаз Cas9 при модификации генома[22].
↑ Mali Prashant, Esvelt Kevin M, Church George M.Cas9 as a versatile tool for engineering biology// Nature Methods.— 2013.— Vol.10.— P.957-963.— ISSN1548-7091.— DOI:10.1038/nmeth.2649.
↑ Kevin R Roy, Justin D Smith, Sibylle C Vonesch, Gen Lin, Chelsea Szu Tu, Alex R Lederer, Angela Chu, Sundari Suresh, Michelle Nguyen, Joe Horecka, Ashutosh Tripathi, Wallace T Burnett, Maddison A Morgan, Julia Schulz, Kevin M Orsley, Wu Wei, Raeka S Aiyar, Ronald W Davis, Vytas A Bankaitis, James E Haber, Marc L Salit, Robert P St.Onge, Lars M Steinmetz. (2018). Multiplexed precision genome editing with trackable genomic barcodes in yeast. Nature Biotechnology, DOI:10.1038/nbt.4137
↑ Dahlman, J. E., Abudayyeh, O. O., Joung, J., Gootenberg, J. S., Zhang, F., & Konermann, S. (2015). Orthogonal gene knockout and activation with a catalytically active Cas9 nuclease. Nature biotechnology, 33(11), 1159—1161. DOI:10.1038/nbt.3390
↑ Kiani, S., Chavez, A., Tuttle, M., Hall, R. N., Chari, R., Ter-Ovanesyan, D., … & Buchthal, J. (2015). Cas9 gRNA engineering for genome editing, activation and repression. Nature methods, 12(11), 1051—1054. DOI:10.1038/nmeth.3580
Liu, H., Wang, L., & Luo, Y. (2018). “Blossom of CRISPR technologies and applications in disease treatment”. Synth Syst Biotechnol. 3 (4): 217—228. DOI:10.1016/j.synbio.2018.10.003. PMID30370342.
Kazuto Yoshimi, Yayoi Kunihiro, Takehito Kaneko, Hitoshi Nagahora, Birger Voigt, Tomoji Mashimo. (2016). “ssODN-mediated knock-in with CRISPR-Cas for large genomic regions in zygotes”. Nature Communications. 7: 10431. DOI:10.1038/NCOMMS10431. PMID26786405.
CRISPR: gene editing is just the beginning. The real power of the biological tool lies in exploring how genomes work. Nature 531, 156—159 (10 March 2016) DOI:10.1038/531156a(на англ.) Обзор разных способов применения Cas9. Хорошие иллюстрации.
CRISPR-Cas: A Laboratory Manual Edited by Jennifer Doudna, University of California, Berkeley; Prashant Mali, University of California, San Diego
Slaymaker, I. M., Gao, L., Zetsche, B., Scott, D. A., Yan, W. X., & Zhang, F. (2016). “Rationally engineered Cas9 nucleases with improved specificity”. Science. 351 (6268): 84—88. DOI:10.1126/science.aad5227.
Kleinstiver B. P., Pattanayak V., Prew M. S., et al., & J. Keith Joung (2016). “High-fidelity CRISPR–Cas9 nucleases with no detectable genome-wide off-target effects”. Nature. DOI:10.1038/nature16526.
Mandegar M. A., Huebsch N., Frolov E. B., et al., & Conklin B. R. (2016). “CRISPR Interference Efficiently Induces Specific and Reversible Gene Silencing in Human iPSCs”. Cell Stem Cell. DOI:10.1016/j.stem.2016.01.022.
Davis, K. M., Pattanayak, V., Thompson, D. B., Zuris, J. A., & Liu, D. R. (2015). “Small molecule–triggered Cas9 protein with improved genome-editing specificity”. Nature chemical biology. 11 (5): 316—318. DOI:10.1038/nchembio.1793.
Zetsche, B., Volz, S. E., & Zhang, F. (2015). “A split-Cas9 architecture for inducible genome editing and transcription modulation”. Nature biotechnology. 33 (2): 139—142. DOI:10.1038/nbt.3149.
Zlotorynski, E. (2016). “Genome engineering: Structure-guided improvement of Cas9 specificity”. Nature Reviews Molecular Cell Biology: 3—3.
Гоглева А. А., Артамонова И. И. (2014). CRISPR-системы: структура и гипотетические функции. Природа 6 (2014), 16-21;
Гоглева А. А., Артамонова И. И. (2014). CRISPR-системы: механизм действия и применения. Природа 7 (2014), 3-9.
Heidi Ledford (2015). “A powerful gene-editing technology is the biggest game changer to hit biology since PCR. But with its huge potential come pressing concerns”. NATURE. 522: 20—24. DOI:10.1038/522020a.
Amanda Andersson-Rolf et al., & Bon-Kyoung Koo (2017). “One-step generation of conditional and reversible gene knockouts”. Nature Methods. DOI:10.1038/nmeth.4156.CRISPR-FLIP, a strategy that provides an efficient, rapid and scalable method for biallelic conditional gene knockouts in diploid or aneuploid cells.
Другой контент может иметь иную лицензию. Перед использованием материалов сайта WikiSort.ru внимательно изучите правила лицензирования конкретных элементов наполнения сайта.
2019-2025 WikiSort.ru - проект по пересортировке и дополнению контента Википедии